Ensiklopedia Dunia

Temukan artikel dan sumber daya untuk membantu menjawab pertanyaan Anda.

Uji difusi cakram

Di laboratorium diagnostik, uji difusi cakram digunakan untuk menentukan kerentanan isolat klinis bakteri terhadap berbagai antibiotik. Antibiotik yang efektif akan menghasilkan zona hambat yang besar (cakram C), sementara antibiotik yang tidak efektif mungkin tidak memengaruhi pertumbuhan bakteri sama sekali (cakram A). Antibiotik yang sebagian rentan terhadap isolat bakteri akan menghasilkan zona hambat berukuran sedang (cakram B).[1][2]
Di laboratorium penemuan obat, uji difusi cakram digunakan untuk menyaring ekstrak bahan alami untuk aktivitas antibakteri. Ekstrak dengan aktivitas antibakteri (misalnya ekstrak petroleum eter, kloroform, etanol, dan aseton di gambar atas) akan menghasilkan zona hambat.[3]

Uji difusi cakram (juga dikenal sebagai uji difusi agar, uji Kirby–Bauer, uji kerentanan antibiotik difusi cakram, uji sensitivitas antibiotik difusi cakram, dan uji KB) adalah uji mikrobiologi berbasis kultur yang digunakan dalam laboratorium diagnostik dan penemuan obat. Dalam laboratorium diagnostik, uji ini digunakan untuk menentukan kerentanan bakteri yang diisolasi dari infeksi pasien terhadap antibiotik yang disetujui secara klinis. Hal ini memungkinkan dokter untuk meresepkan pengobatan antibiotik yang paling tepat.[1][2][4][5] Dalam laboratorium penemuan obat (terutama laboratorium bioprospeksi) uji ini digunakan untuk menyaring bahan biologis (misalnya ekstrak tumbuhan, kaldu fermentasi bakteri) dan kandidat obat untuk aktivitas antibakteri. Dalam bioprospeksi, pengujian dapat dilakukan dengan galur bakteri berpasangan untuk mencapai dereplikasi dan mengidentifikasi sementara mekanisme kerja antibakteri.[6][7]

Di laboratorium diagnostik, uji ini dilakukan dengan menginokulasi permukaan pelat agar dengan bakteri yang diisolasi dari infeksi pasien. Cakram kertas yang mengandung antibiotik kemudian dioleskan ke agar dan pelat diinkubasi. Jika antibiotik menghentikan pertumbuhan bakteri atau membunuh bakteri, akan ada area di sekitar cakram tempat bakteri belum cukup tumbuh untuk terlihat. Ini disebut "zona penghambatan". Kerentanan isolat bakteri terhadap setiap antibiotik kemudian dapat dikuantifikasi secara semi-kuantifikasi dengan membandingkan ukuran zona penghambatan ini dengan pangkalan data informasi tentang bakteri yang diketahui rentan terhadap antibiotik, cukup rentan, dan resisten. Dengan cara ini, dimungkinkan untuk mengidentifikasi antibiotik yang paling tepat untuk mengobati infeksi pasien.[1][2] Meskipun uji difusi cakram tidak dapat digunakan untuk membedakan aktivitas bakteriostatik dan bakterisida, uji ini lebih praktis daripada metode uji kerentanan lainnya seperti pengenceran kaldu.[4]

Di laboratorium penemuan obat, uji difusi cakram dilakukan sedikit berbeda dibandingkan di laboratorium diagnostik. Dalam pengaturan ini, bukan galur bakteri yang harus dikarakterisasi, tetapi ekstrak uji (misalnya ekstrak tumbuhan atau mikroba). Oleh karena itu, pelat agar diinokulasi dengan galur bakteri dengan fenotipe yang diketahui (seringkali galur ATCC atau NCTC), dan cakram yang berisi ekstrak uji diaplikasikan ke permukaan (lihat di bawah). Ukuran zona hambatan tidak dapat digunakan sebagai ukuran semi-kuantitatif potensi antibakteri karena ekstrak yang berbeda mengandung molekul dengan karakteristik difusi yang berbeda (ukuran molekul, hidrofilisitas, dll. yang berbeda). Ukuran zona hambatan dapat digunakan untuk tujuan dereplikasi. Ini dicapai dengan menguji setiap ekstrak terhadap galur bakteri yang berpasangan (misalnya galur yang rentan dan resisten terhadap streptomisin untuk mengidentifikasi ekstrak yang mengandung streptomisin). Galur berpasangan (misalnya tipe liar dan galur target yang mengekspresikan secara berlebihan) juga dapat digunakan untuk mengidentifikasi mekanisme aksi antibakteri.[6][7]

Sejarah

Difusi agar pertama kali digunakan oleh Martinus Beijerinck pada tahun 1889 untuk mempelajari efek auksin pada pertumbuhan bakteri. Namun, metode ini telah dikembangkan, disempurnakan, dan distandarisasi oleh banyak ilmuwan dan organisasi ilmiah selama bertahun-tahun termasuk George F. Reddish, Norman Heatley, James G. Vincent,[8] Alfred W. Bauer, William M.M. Kirby, John C. Sherris,[4][5] Hans Martin Ericsson, Organisasi Kesehatan Dunia, Institut Standar Klinis dan Laboratorium, Kelompok Referensi Swedia untuk Antibiotik, Deutsches Institut für Normung, Masyarakat Britania Raya untuk Kemoterapi Antimikroba, dan lainnya.[8]

Prinsip

Kultur bakteri murni disuspensikan dalam larutan garam, kekeruhannya distandarisasi, dan dioleskan secara merata pada pelat agar. Cakram kertas saring yang telah diresapi antibiotik atau ekstrak kemudian diletakkan pada permukaan agar. Konstituen cakram berdifusi dari kertas saring ke dalam agar. Konsentrasi konstituen ini akan paling tinggi di dekat cakram dan akan menurun seiring bertambahnya jarak dari cakram. Jika antibiotik atau ekstrak efektif melawan bakteri pada konsentrasi tertentu, tidak akan ada koloni yang tumbuh di tempat yang konsentrasinya dalam agar lebih besar atau sama dengan konsentrasi efektif. Ini adalah zona penghambatan. Secara umum, zona penghambatan yang lebih besar berkorelasi dengan konsentrasi hambat minimum (MIC) antibiotik atau ekstrak yang lebih rendah untuk galur bakteri tersebut.[1] Pengecualian untuk hal ini adalah ketika molekul antibiotik atau ekstrak berukuran besar atau hidrofobik karena molekul-molekul ini berdifusi melalui agar secara perlahan.[6]

Metode standar

Uji Kirby–Bauer Standar: Cakram putih berisi antibiotik ditampilkan pada cawan agar bakteri. Zona melingkar dengan pertumbuhan bakteri yang buruk mengelilingi beberapa cawan, menunjukkan kerentanan terhadap antibiotik.

Cakram agar dan persiapan inokulum

Semua aspek prosedur Kirby–Bauer distandarisasi untuk memastikan hasil yang konsisten dan akurat. Oleh karena itu, laboratorium harus mematuhi standar ini. Media yang digunakan dalam uji Kirby–Bauer harus berupa agar Mueller–Hinton dengan kedalaman hanya 4 mm, dituangkan ke dalam cawan Petri berukuran 100 mm atau 150 mm. Tingkat pH agar harus antara 7,2 dan 7,4. Inokulum bakteri disiapkan dengan mengencerkan kultur kaldu agar sesuai dengan standar kekeruhan McFarland 0,5; yang setara dengan sekitar 150 juta sel per mL.[1]

Inokulasi dan Inkubasi

Menggunakan teknik aseptik, kultur kaldu organisme tertentu dikumpulkan dengan kapas usap steril. Untuk bakteri Gram-negatif, cairan berlebih dikeluarkan dari kapas usap dengan menekan atau memutarnya secara perlahan ke bagian dalam tabung. Kapas usap kemudian digoreskan pada cawan agar Mueller–Hinton untuk membentuk lapisan bakteri. Untuk mendapatkan pertumbuhan yang seragam, cawan agar digoreskan dengan kapas usap ke satu arah, diputar 120° dan digoreskan lagi, diputar 120° lagi dan digoreskan lagi. Menggunakan dispenser cakram antibiotik, cakram yang berisi antibiotik spesifik kemudian ditempelkan pada cawan. Ini harus dilakukan dalam waktu 15 menit setelah inokulasi. Pinset yang disterilkan dengan api digunakan untuk menekan setiap cakram secara perlahan ke agar dan memastikannya melekat. Cawan kemudian diinkubasi semalaman, biasanya pada suhu 35 °C. Cawan harus diinkubasi dalam waktu 15 menit setelah penggunaan cakram antibiotik.[1]

Modifikasi media uji

Bakteri tertentu memerlukan penambahan larutan 5% darah kuda yang didefibrinasi secara mekanis dan β-NAD (MH-F agar).[1] Tabel berikut menunjukkan kebutuhan media mikroorganisme yang umum diuji:

Persyaratan media difusi cakram[1]
Agar MH standar Agar MH-F
  • Enterobacteriales
  • Pseudomonas spp.
  • Stenotrophomonas maltophilia
  • Acinetobacter spp.
  • Staphylococcus spp.
  • Enterococcus spp.
  • Aeromonas spp.
  • Achromobacter xylosoxidans
  • Vibrio spp.
  • Bacillus spp.
  • Burkholderia pseudomallei
  • grup Streptococcus A, B, C, G
  • Streptococcus pneumoniae
  • grup Streptococcus viridans
  • Haemophilus influenzae
  • Moraxella catarrhalis
  • Listeria monocytogenes
  • Pasteurella multocida
  • Campylobacter jejuni dan C. coli
  • Corynebacterium
  • Aerococcus sanguinicola dan A. urinae
  • Kingella kingae
  • Brucella melitensis

Kontrol Kualitas

Untuk memastikan keakuratan hasil uji, metode kontrol kualitas harus digunakan. Untuk memantau kinerja uji, galur bakteri khusus digunakan sebagai kontrol positif atau negatif. Ketika efikasi β-laktamase diuji, galur khusus yang menunjukkan resistensi terhadap β-laktam digunakan. Selain itu, media spesifik digunakan untuk menguji antibiotik tertentu. Misalnya, ketika menguji kerentanan kotrimoksazol, media dengan timina dan timidina berlebih direkomendasikan.[1] Tabel berikut mencantumkan galur kontrol kualitas yang umum digunakan dalam metode difusi cakram:

Galur kontrol kualitas (per Januari 2025))[1]
Bakteri Galur Deskripsi Antibiotik yang diuji
ATCC NCTC[9] CIP[10] DSM[11] CCUG[12] CECT[13]
E. coli 25922[14] 12241 76,24 1103 17620 434 rentan (tipe liar) neomisin, kolistin, kanamisin, sefaleksin, gentamisin, sefamandol, sefalotin, tetrasiklin, sefaloglisin, sefaloridin, asam nalidiksat, kloramfenikol[14]
35218[15] 11954 102181 5923 30600 943 menghasilkan β-laktamase TEM-1, yang resisten terhadap ampisilin (digunakan untuk memeriksa komponen β-laktamase dari cakram kombinasi β-laktam)
- 13353[16] - - - - menghasilkan CTX-M-15 dan OXA-1 (digunakan untuk memeriksa komponen β-laktamase dari cakram kombinasi β-laktam) sefotaksim[16]
Klebsiella pneumoniae 700603[17][Catatan 1] 13368 - - 45421 7787 menghasilkan SHV-18 (β-laktamase spektrum luas, digunakan untuk memeriksa komponen β-laktamase dari cakram kombinasi β-laktam)
BAA-2814[18] - - - - - menghasilkan KPC-3, SHV-11, TEM-1 (digunakan untuk memeriksa komponen β-laktamase dari cakram kombinasi β-laktam) kombinasi penghambat β-laktam/β-laktamase baru (misalnya meropenem/vaborbaktam)[18]
Pseudomonas aeruginosa 27853[19] 12903 76,110 1117 17619 108 rentan (tipe liar)
Staphylococcus aureus 29213[20] 12973 103429 2569 15915 794 menghasilkan β-laktamase (lemah)
- 12493[21] - - 67181 MRSA (plasmid mecA positif) metisilin dan antibiotik lain yang dipengaruhi oleh galur MRSA[21]
Enterococcus faecalis 29212[22] 12697 103214 2570 9997 795 rentan (tipe liar)
51299[23] 13379 104676 12956 34289 - HLAR (enzim pengubah aminoglikosida), resisten terhadap vankomisin (plasmid vanB positif) gentamisin, streptomisin[23]
Streptococcus pneumoniae 49619[24] 12977 104340 11967 33638 - resisten terhadap benzilpenisilin
Haemophilus influenzae 49766[25] 12975 103570 11970 29539 - rentan (tipe liar)
49247[26] 12699 104604 9999 26214 - penurunan kerentanan terhadap β-laktam (menunjukkan modifikasi protein pengikat penisilin)
Campylobacter jejuni 33560[27] 11351 70,2T 4688 11284 - rentan (tipe liar), membutuhkan lingkungan mikroaerobik dan suhu inkubasi yang lebih tinggi (41±1°C)

Metode alternatif

Beberapa variasi metode difusi cakram telah dikembangkan, termasuk metode cawan penisilin Oxford dan Etest yang digunakan di laboratorium diagnostik rumah sakit,[28][29] serta metode difusi sumur, difusi silinder, dan bioautografi yang digunakan di laboratorium penemuan dan pengembangan obat.[6][30]

Metode cawan penisilin Oxford

Cakram berisi konsentrasi antibiotik yang meningkat ditempatkan pada media bakteri yang telah disemai pada permukaan agar dan lempeng diinkubasi. Ukuran zona diukur dari tepi cakram hingga ujung zona bening. Interpretasi lebih rumit pada populasi kerentanan campuran. Ukuran zona di-plot sebagai dimensi linier atau kuadrat jarak sebagai fungsi logaritma natural konsentrasi antibiotik dalam cakram. MIC ditentukan dari titik nol intersep regresi linier yang sesuai dengan data.[31] Titik intersep itu sendiri merupakan logaritma dari MIC. Kemiringan garis regresi berkaitan dengan koefisien difusi antibiotik tertentu dalam agar.[28]

Uji Kerentanan Antibiotik Cepat EUCAST (RAST)

Metode RAST berfungsi sebagai cara cepat untuk memastikan kerentanan antibiotik dan diciptakan sebagai modifikasi dari uji difusi cakram klasik. Metode ini memungkinkan untuk mempersingkat waktu inkubasi menjadi 16-20 jam. Skor uji dibaca setelah 4, 6, 8, dan 16-20 jam. Dibandingkan dengan metode standar, RAST tidak menghasilkan zona hambat yang jelas dalam rentang waktu sesingkat itu (semua bakteri kecuali S. pneumoniae memiliki peluang lebih tinggi dari 90% untuk dapat dibaca setelah 6 jam). Untuk galur kontrol kualitas, galur tersebut diencerkan 1:1.000.000 dan darah kuda atau domba yang telah didefibrinasi ditambahkan. Tabel titik henti RAST khusus harus digunakan saat menginterpretasikan hasil karena perbedaan kalibrasi metode.[32]

Galur kendali mutu yang tervalidasi meliputi: E. coli ATCC 25922, P. aeruginosa ATCC 27853, S. aureus ATCC 29213, E. faecalis ATCC 29212, S. pneumoniae ATCC 49619.[33]

Skrining mekanisme resistensi antibiotik dalam RAST

RAST memungkinkan penentuan cepat kemungkinan resistensi antibiotik dalam kultur yang diuji. RAST memungkinkan pemeriksaan E. coli dan K. pneumoniae penghasil ESBL dan/atau karbapenemase, masing-masing menggunakan sefotaksim/seftazidim (setelah 4 jam) dan meropenem (setelah 6 jam). Namun, hasil ini tidak kuantitatif dan hanya boleh digunakan untuk skrining dalam tes medis rutin.[34][35] Dalam uji klinis, metode RAST menghasilkan peningkatan signifikan dalam memprediksi efikasi terapi antibiotik.[36]

Metode pra-difusi cakram

Cakram berisi antibiotik ditempatkan pada cawan agar Mueller-Hinton yang belum diinokulasi dan diinkubasi selama 2 jam. Kemudian, cakram tersebut dikeluarkan dan suspensi bakteri yang sebelumnya disiapkan menggunakan mikrodilusi kaldu diaplikasikan dan cakram lain dengan antibiotik yang berbeda ditempatkan tepat di tempat yang sama dengan cakram sebelumnya. Setelah inkubasi selama 16-20 jam, hasilnya dikorelasikan dengan nilai MIC antibiotik pertama. Contoh metode pra-difusi adalah pengujian efikasi seftazidim/avibaktam (cakram primer) secara in vitro dalam kaitannya dengan aztreonam (cakram sekunder).[37]

Pengujian obat antijamur

Metode difusi cakram dapat digunakan untuk menguji kerentanan terhadap antijamur.[38][39]

Uji bioautografi dengan dua ekstrak dari kaldu kultur Vibrio sp. A1SM3-36-8 yang berbeda ditotolkan pada setiap pelat KLT (a) terhadap B. subtilis, dan (b) terhadap MRSA[40]

Bioautografi

Dibandingkan dengan metode berbasis cakram klasik, bioautografi menggunakan kromatografi lapis tipis untuk memisahkan komponen-komponen dari campuran yang diuji. Kemudian, pelat KLT dapat diletakkan di atas agar yang telah diinokulasi dan dibiarkan berdifusi ke dalamnya (bioautografi kontak) atau ditutup dengan kaldu yang mengandung mikroba (bioautografi langsung). Kemudian, sampel diinkubasi dan zona penghambatan diukur.[41][42][40] Sebagai alternatif, pelat KLT dapat ditutup dengan agar cair dalam bioautografi lapisan agar.[43]

Untuk memvisualisasikan zona penghambatan dalam bioautografi langsung, reagen yang mendeteksi aktivitas dehidrogenase digunakan (misalnya garam tetrazolium, yang diubah oleh dehidrogenase mikroba menjadi formazan kromogenik).[41]

Gambar lainnya

Catatan

  1. ^ Klebsiella quasipneumoniae Brisse et al

Referensi

  1. ^ a b c d e f g h i j EUCAST (January 2021). "Antimicrobial susceptibility testing: EUCAST disk diffusion method" (PDF). www.eucast.org. EUCAST. Diakses tanggal March 16, 2021.
  2. ^ a b c Brown DF, Kothari D (October 1975). "Comparison of antibiotic discs from different sources". Journal of Clinical Pathology. 28 (10): 779–83. doi:10.1136/jcp.28.10.779. PMC 475859. PMID 1214010.
  3. ^ Sahu, BK (2013). Antimicrobial properties of aerial part of Sesbania grandiflora (Linn.) (Semester project). The Pharmaceutical College Barpali, India.
  4. ^ a b c Bauer AW, Perry DM, Kirby WM (August 1959). "Single-disk antibiotic-sensitivity testing of staphylococci: An analysis of technique and results". Archives of Internal Medicine. 104 (2): 208–216. doi:10.1001/archinte.1959.00270080034004. PMID 13669774.
  5. ^ a b Bauer AW, Kirby WM, Sherris JC, Turck M (April 1966). "Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method". American Journal of Clinical Pathology. 45 (4): 493–496. doi:10.1093/ajcp/45.4_ts.493. PMID 5325707.
  6. ^ a b c d Cushnie TP, Cushnie B, Echeverría J, Fowsantear W, Thammawat S, Dodgson JL, Law S, Clow SM (June 2020). "Bioprospecting for antibacterial drugs: a multidisciplinary perspective on natural product source material, bioassay selection and avoidable pitfalls". Pharmaceutical Research. 37 (7) 125. doi:10.1007/s11095-020-02849-1. PMID 32529587. S2CID 254932190.
  7. ^ a b Singh SB, Young K, Miesel L (August 2011). "Screening strategies for discovery of antibacterial natural products". Expert Review of Anti-infective Therapy. 9 (8): 589–613. doi:10.1586/eri.11.81. PMID 21819327. S2CID 986144.
  8. ^ a b c Wheat PF (July 2001). "History and development of antimicrobial susceptibility testing methodology". Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 48 (Supplement 1): 1–4. doi:10.1093/jac/48.suppl_1.1. PMID 11420332.
  9. ^ "Culture Collections". Culture Collections (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  10. ^ "Bacteria (CIP)". Institut Pasteur (dalam bahasa Prancis). 2021-06-28. Diakses tanggal 2025-02-24.
  11. ^ "Leibniz Institute DSMZ: Welcome to the Leibniz Institute DSMZ". www.dsmz.de. Diakses tanggal 2025-02-24.
  12. ^ "Culture Collection University Of Gothenburg". www.ccug.se. Diakses tanggal 2025-02-24.
  13. ^ "Spanish Type Culture Collection". www.uv.es. Diakses tanggal 2025-02-24.
  14. ^ a b "Escherichia coli (Migula) Castellani and Chalmers - 25922 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  15. ^ "Escherichia coli (Migula) Castellani and Chalmers - 35218 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  16. ^ a b "Escherichia coli". www.culturecollections.org.uk (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  17. ^ "Klebsiella quasipneumoniae Brisse et al - 700603 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  18. ^ a b "Klebsiella pneumoniae (Schroeter) Trevisan - BAA-2814 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  19. ^ "Pseudomonas aeruginosa (Schroeter) Migula - 27853 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  20. ^ "Staphylococcus aureus subsp. aureus Rosenbach - 29213 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  21. ^ a b "Staphylococcus aureus". www.culturecollections.org.uk (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  22. ^ "Enterococcus faecalis (Andrewes and Horder) Schleifer and Kilpper-Balz - 29212 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  23. ^ a b "Enterococcus faecalis (Andrewes and Horder) Schleifer and Kilpper-Balz - 51299 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  24. ^ "Streptococcus pneumoniae (Klein) Chester - 49619 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  25. ^ "Haemophilus influenzae (Lehmann and Neumann) Winslow et al. - 49766 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  26. ^ "Haemophilus influenzae (Lehmann and Neumann) Winslow et al. - 49247 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  27. ^ "Campylobacter jejuni subsp. jejuni (Jones et al.) Steele and Owen - 33560 | ATCC". www.atcc.org (dalam bahasa Inggris). Diakses tanggal 2025-02-24.
  28. ^ a b Bonev, B; Hooper, J; Parisot, J (June 2008). "Principles of assessing bacterial susceptibility to antibiotics using the agar diffusion method". Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 61 (6): 1295–301. doi:10.1093/jac/dkn090. PMID 18339637.
  29. ^ Lonsway DR, Elrod MG, Kendrick N, Tiller R, Sullivan MM, Edwards JR, Blaney DD, Karlsson M (April 2020). "Correlation between Etest and reference broth microdilution for antimicrobial susceptibility testing of Burkholderia pseudomallei". Microbial Drug Resistance. 26 (4): 311–318. doi:10.1089/mdr.2019.0260. PMID 31596673. S2CID 204029543.
  30. ^ Kshirsagar MM, Dodamani AS, Vishwakarma P, Mali G, Khobragadec VR, Deokar RN (November 2020). "Comparative assessment of antibacterial efficacy of commercially available different dental gels: An in-vitro study". Reviews on Recent Clinical Trials. 16 (2): 206–211. doi:10.2174/1574887115666201104155458. PMID 33148158. S2CID 226257747.
  31. ^ "Analysis of bacterial sensitivity to antibiotics by the agar diffusion method". agardiffusion.com. Diakses tanggal March 16, 2021.
  32. ^ "Methodology - EUCAST rapid antimicrobial susceptibility testing (RAST) directly from positive blood culture bottles. Version 5.0" (PDF). Diakses tanggal 24 February 2025.
  33. ^ "Quality control criteria for the implementation of the RAST method to be performed when implementing the method, when training new staff or following a change in blood culture system or any other substantial change in the system. Version 7.0" (PDF). 5 July 2024. Diakses tanggal 24 February 2025.
  34. ^ "Screening for ESBL and carbapenemases in E. coli and K. pneumoniae for epidemiological purposes as part of the RAST procedure. EUCAST Guidelines for detection of resistance mechanisms and specific resistance of clinical and/or epidemiological importance using EUCAST rapid antimicrobial susceptibility testing (RAST) directly from positive blood culture bottles. Version 2.0" (PDF). April 2022. Diakses tanggal 24 February 2025.
  35. ^ Jonasson, Emma; Matuschek, Erika; Kahlmeter, Gunnar (2023-12-01). "Evaluation of prolonged incubation time of 16–20 h with the EUCAST rapid antimicrobial susceptibility disc diffusion testing method". Journal of Antimicrobial Chemotherapy (dalam bahasa Inggris). 78 (12): 2926–2932. doi:10.1093/jac/dkad332. ISSN 0305-7453.
  36. ^ Cardot Martin, Emilie; Colombier, Marie Alice; Limousin, Lucie; Daude, Orianne; Izarn, Oscar; Cahen, Pierre; Farfour, Eric; Lesprit, Philippe; Vasse, Marc (November 2022). "Impact of EUCAST rapid antimicrobial susceptibility testing (RAST) on management of Gram-negative bloodstream infection". Infectious Diseases Now (dalam bahasa Inggris). 52 (8): 421–425. doi:10.1016/j.idnow.2022.09.002. PMID 36108973.
  37. ^ Lima, Keila de Oliveira; de Lima, Aline Valério; Rocha, Darlan Augusto da Costa; Sampaio, Suely Carlos Ferreira; Cappellano, Paola; Sampaio, Jorge Luiz Mello (March 2022). "A simple disk pre-diffusion test to predict in vitro aztreonam/avibactam activity against NDM-producing Klebsiella pneumoniae complex". Journal of Global Antimicrobial Resistance (dalam bahasa Inggris). 28: 49–52. doi:10.1016/j.jgar.2021.12.009. PMID 34936924.
  38. ^ Ozkutuk, A.; Ergon, C.; Metin, D.Y.; Yucesoy, M.; Polat, S.H. (February 2008). "Comparison of Disk Diffusion, E-Test and Broth Microdilution Test in Determination of Susceptibility of Aspergillus Species to Amphotericin B, Itraconazole and Voriconazole". Journal of Chemotherapy (dalam bahasa Inggris). 20 (1): 87–92. doi:10.1179/joc.2008.20.1.87. ISSN 1120-009X. PMID 18343749.
  39. ^ Kronvall, Göran; Karlsson, Inga (April 2001). "Fluconazole and Voriconazole Multidisk Testing of Candida Species for Disk Test Calibration and MIC Estimation". Journal of Clinical Microbiology (dalam bahasa Inggris). 39 (4): 1422–1428. doi:10.1128/JCM.39.4.1422-1428.2001. ISSN 0095-1137. PMC 87949. PMID 11283066.
  40. ^ a b Conde-Martínez, Natalia; Acosta-González, Alejandro; Díaz, Luis E.; Tello, Edisson (December 2017). "Use of a mixed culture strategy to isolate halophilic bacteria with antibacterial and cytotoxic activity from the Manaure solar saltern in Colombia". BMC Microbiology (dalam bahasa Inggris). 17 (1): 230. doi:10.1186/s12866-017-1136-x. ISSN 1471-2180. PMC 5721385. PMID 29216824.
  41. ^ a b Choma, Irena M.; Grzelak, Edyta M. (May 2011). "Bioautography detection in thin-layer chromatography". Journal of Chromatography A (dalam bahasa Inggris). 1218 (19): 2684–2691. doi:10.1016/j.chroma.2010.12.069. PMID 21232747.
  42. ^ Wang, Meng; Zhang, Yirong; Wang, Ruijie; Wang, Zhibin; Yang, Bingyou; Kuang, Haixue (2021-07-31). "An Evolving Technology That Integrates Classical Methods with Continuous Technological Developments: Thin-Layer Chromatography Bioautography". Molecules (dalam bahasa Inggris). 26 (15): 4647. doi:10.3390/molecules26154647. ISSN 1420-3049. PMC 8347725. PMID 34361800.
  43. ^ Nuthan, Bettadapura Rameshgowda; Rakshith, Devaraju; Marulasiddaswamy, Kuppuru Mallikarjunaiah; Rao, H C Yashavantha; Ramesha, Kolathur Puttamadaiah; Mohana, Nagabhushana Chandra; Siddappa, Shiva; Darshan, Doreraj; Kumara, Kigga Kaadappa Sampath; Satish, Sreedharamurthy (2020-08-21). "Application of Optimized and Validated Agar Overlay TLC–Bioautography Assay for Detecting the Antimicrobial Metabolites of Pharmaceutical Interest". Journal of Chromatographic Science (dalam bahasa Inggris). 58 (8): 737–746. doi:10.1093/chromsci/bmaa045. ISSN 0021-9665. PMID 32766714.

Konten ini disalin dari wikipedia, mohon digunakan dengan bijak.

Toploker.com

Beranda

Program Studi

Karirnews
×
Advertisement